Raupensuche

Zitat von scx3n

im Sommer Hemaris fuciformis sehr gut damit nachweisen

Phänomenal, danke scx3n!

Hätte ich damals schon den Gedanken gehabt, hätte ich mir den Mehraufwand für die

Hemaris-Arten erspart.

Das vereinfacht das Ganze auf 1/10tel schätz ich. Ein ganz neues Kapitel in der Detektion

von Präimaginalstadien. Die Falter sind dann sogar 20x schwerer anzutreffen, schätz ich.

Vielleicht gibts da auch noch Alternativen im Suchmechanismus, um die Verbreitung von Arten besser zu erfassen.

Lichtfang, Köder (Pheromone), Lockpflanzen und die Freilandsuche für Tag-und Nachtfalter, aber für Präimaginalstadien immerhin zur Ei-/Raupensuche noch der etwas andere "Lichtfang".

Man verwendet schon ewig Lichtfallen, aber von der Detektion von Präimaginalstadien per UV hatte ich bis dato diesen Jahres noch nichts gehört.

Hemaris-Arten hab ich bewusst noch nie detektiert, viel zu selten. Mich würde interessieren, ob die Falter bevorzugte

Imaginalhabitate (Trockenhänge mit Blütenvielfalt) bzw. Präferenzen für bestimmte Saugpflanzen aufweisen und wie groß deren Wanderradius in Abhängigkeit vom Schlupfort ist. Taubenschwänzchen kann man an allerlei Blüten zufällig antreffen (wahrscheinlich da bevorzugt große Ausbreitung). Im städtischen Raum wohl bevorzugt an Balkonpflanzen.

Man sieht so viele Taubenschwänzchen, ich hab durch Zufall an 2 Stellen auf der Suche nach Hyles gallii

Raupen vom Taubenschwänzchen gefunden. 1x sogar beide Arten zusammen an Labkraut direkt am Schotterweg, gallii dabei in der lokal schwächer ausgeprägten 2. Generation, wobei ilia mittlerweile ja auch häufiger in die zweite Generation gehen soll.

Dabei wäre es interessant, ob jemand bereits ausgewachsene ilia-Raupen im August/September (?) finden konnte.

Generell eignet sich lokal viell. eine Suchanpassung einer lokalen 2. Generation. Allerdings wird der Suchaufwand in den meisten Fällen wohl ähnlich sein.

Aber die beiden Hemaris-Arten sind irgendwie anspruchsvoller. Ich hatte wahrscheinlich mal zufällig eine befressene Acker-Witwenblume mit Kot von Hemaris tityus an einem Wegrand gefunden.

Mir fällt auch noch eine weitere Art ein, die im Nachweismechanismus (sofern nicht lichtfliegend an Lichtfallen) maximal schwierig zu detektieren ist, Hyles vespertilio soll sich fast den ganzen Tag unter Steinen verstecken.

bellargus: Stimmt, ich schätze mit UV-Licht ist die Detektion weitestgehend abgedeckt. Ich hatte noch in Erinnerung, dass ich einmal einen Beitrag gelesen hatte, wo jemand parallel zu UV-Licht IR-Licht verwendet hatte, aber ich glaub dabei ging es um die Detektion von körperlichen Schäden. Bei hoher Wellenlänge, wird wahrscheinlich nur wenig absorbiertes Licht wieder emittiert.

Satyrinae und sicherlich einige weitere Schmetterlingsarten bleiben damit noch offen, aber das ist schonmal ein gutes Spektrum an Nachweismethoden. Optimalerweise hat man wenige Futterpflanzen auf Schotter oder ähnlich karg bewachsenen Flächen, aber bei einem großen Angebot bspw. an Heckenkirschen braucht man wohl einen recht großen Aufwand. Das lohnt wahrscheinlich nur, wenn die Art recht häufig ist.

Je seltener eine Art, umso mehr muss man verstehen, was nu genau Sache ist. Mir hat bisher immer geholfen, zu überlegen, was gefällt Parasiten und Pflanzen nicht und was ist noch gerade so fressbar. Wenn Hornklee fasst am krepieren ist und keine Schlupfwespen mehr anlocken kann, stürzen sich Icarus-Bläuling und Colias hyale drauf mit bis zu 3 Eiern/Blatt.

Nachteilig für die Falter ist, dass sie dann winziger werden (weniger Eier für Weibchen) und die Männchen schlechtere Duftschuppen (Werben von Weibchen) ausbilden. Das wurde auch mal in irgendeinem Bericht gut untersucht.

Ich schätze bis L4 kommen junge Räupchen auch noch gut mit einem gemeinsamen Fraßblatt aus, aber ab L5 werden ja ca. 86% der Nahrungsaufnahme insgesamt aufgenommen.

Bei iris konnte ich das mal gut beobachten. 9/10 Raupen schafften die Entwicklung zu L5 nicht. 4/10 kamen aber immerhin bis L4.

Ab L5 fand ich eine Raupe, die hatte den ganzen Weidenast kahl gefressen. Ab L5 erkennt man es dann auch an den Pflanzen.

Bei Aglais io kann ich ab L2 der Räupchen zu 40% Raupenfliegen in max. 50cm Entfernung zur Pflanze bei abwartender Haltung/ Eiablage an Brennnessel beobachten. In feuchteren Brennnesselfluren nimmt dann wahrscheinlich auch die Zahl der Schlupfwespen zu.

Bei der Raupensuche nach anderen Raupen fand ich häufiger Schlupfwespen in unmittelbarer Nähe, mitunter auch bei populi eine ca. 7cm lange Schlupfwespe. Bei Nymphalis polychloros eine Raupenfliege.

Mein Problem ist immer, draußen nicht festzuwachsen. Wenn ich 1km aller 3h schaffe ist das viel. In artenreichen Gebieten ist die Zeit immer knapp.

Gibt halt ökologisch keine Grenzen. Angefangen hatte ich mit Favonius quercus als erste Hürde. So richtig schwierig finde ich ilia.

Ich hatte bisher 6 Raupen an insgesamt 4 Standorten gefunden. Jedesmal hatte ich die Kamera nicht sofort zur Hand. Danach suchte ich zw. 40min und einer Stunde bis ich die Raupen wiederfand. 1x vergeblich. Ich hatte mir selbst den besetzten Ast ca. 7x angeschaut und erst beim 8. Mal die Raupe wiedergefunden.

Mal sehen, ob sich Hyles-Raupen mit UV detektieren lassen. Am spannendsten fänd ich Agrius convolvuli bei Wucherungen an Zaunwinde und Acherontia atropos in Kartoffelfeldern. Da ist mir der Aufwand beim Ablaufen zu groß. Die Fraßbilder und Kotkrümel sind auch nicht hilfreich.

Mir geht es meist um den ökologischen Aspekt. Ich denk mir halt, wenn Leute vorbeilaufen, an dem Weg sitzen überall populi-Raupen oder dort ist eine spannende Ruderalsenke mit Schotter und rein äußerlich sind die Gebiete komplett unspektakulär.

Ist aber auch toll, zu wissen, egal wie eintönig die Landschaft aussieht, irgendeinem scheint es etwas zu nützen und man kann sich das Ganze noch ein zweites Mal genauer anschauen. Man lernt dann auch viel über den Ort in seiner Funktion.

Grüße Kai

Zitat von palaeno.

...und der sehr seltene Daphnis nerii in trockenen Flusstalauen oder an Walnussbäumen.

Was soll nerii an Walnuss machen?

Was für Lampen benutzt Ihr denn für diese UV-Suche? Eine LepiLed ist vielleicht etwas unhandlich und augenschädigend, oder?

Moin,

also hab's grad bei Acherontia atropos getestet und bei denen ist in L4 und L5 die markante blau oder violette Rückzeichnung im UV-Licht gut zu sehen. Damit das aber wirklich auffällig ist, zb in einem Kartoffelfeld, braucht es schon eine starke Lampe.

Mit Hemaris tityus funktioniert es (bei mir!) leider nicht. Konnte ich auch dieses Jahr testen. Das hätte die Suche nach den Imaginalstadien stark erleichtert. Aaaaber soll nicht sein. Da bedeutet weiterhin viele Blätter drehen in scheinbar geeigneten Biotopen, im richtigen Zeitfenster, welches sich jedes etwas ändert, etc etc....man kann auch sagen, tityus ist schwer zu finden. In eng begrenzten Fluggebieten ist die Art aber meist leichter zu finden, wenn man schon etwas Erfahrung hat.

In geeigneten Biotopen ist auch tityus, so wie fuciformis, am späten Vormittag und frühen Nachmittag auf Nahrungsflug und lässt sich hier vor allem an blau und violett blühenden Pflanzen nachweisen. Ein geübtes Auge kann auch im Flug beide Arten unterscheiden. Sowohl am Flugverhalten, als auch in der Thoraxfärbung.

Allerdings sind die Biotopansprüche von tityus bedeutend höher angesiedelt, als denn die von fuciformis. So wird man lange suchen müssen, um geeignete Stellen zu finden, welche dann auch noch von tityus besetzt sind.

Ich war die letzten Jahre verstärkt in den Alpen unterwegs und nur an sehr wenigen der mir geeignet erscheinenden Stellen konnte ich tityus tatsächlich nachweisen, obwohl die Biotope mir ideal erschienen. Wie einige von euch wissen, beschäftige ich mich mit tityus seit über 20 Jahren und bilde mir ein mittlerweile einen "gewissen Blick" dafür entwickelt zu haben. Aber tityus ist ein echtes Mi....vieh.

Viel Glück bei der Suche

Rudi

Um das Thema UV-Licht mal wieder aufzugreifen, es lohnt sich immer wieder beim Abendspaziergang eine Leuchte dabei zu haben. Hier ein Beispiel für Agrius convolvuli im Bayerischen Wald. Der Fund ist zwar nicht ungewöhnlich aber dafür umso freudiger.